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學術分享 I 乳酸功能化3D打印PCL/nHA支架通過代謝-表觀遺傳串擾驅(qū)動骨髓間充質(zhì)干細胞成骨分化

發(fā)布時間:2025-09-01   瀏覽量:   分享到:

乳酸功能化3D打印PCL/nHA支架通過代謝-表觀遺傳串擾驅(qū)動BMSC成骨研究

乳酸功能化3D打印PCL/nHA支架通過代謝-表觀遺傳串擾驅(qū)動BMSC成骨研究

曾敏a,b,劉浩a,b,盧偉a,b,陳燦a,b,林章遠a,b,趙瑞波a,b,*

a中南大學湘雅醫(yī)院骨科,中國長沙;b中南大學湘雅醫(yī)院國家老年疾病臨床醫(yī)學研究中心,中國長沙

*通訊作者:趙瑞波,中南大學湘雅醫(yī)院骨科,中國長沙;郵箱:370781162@qq.com

3D打印支架 乳酸鈉 代謝-表觀遺傳串擾 賴氨酸乳酸化 骨再生

1. 研究背景

創(chuàng)傷、感染或腫瘤切除導致的臨界尺寸骨缺損是臨床治療的重大難題。目前的金標準治療方案(如自體移植、異體移植)受限于供體短缺、免疫并發(fā)癥及感染風險,亟需合成替代材料。

組織工程策略(仿生支架結合干細胞)具有治療潛力,但仍存在未解決的問題:① 聚己內(nèi)酯(PCL)支架雖具備可調(diào)節(jié)降解性、力學耐久性及監(jiān)管批準資質(zhì),但其固有疏水性和低生物活性需與生物活性成分(如天然骨主要無機成分納米羥基磷灰石nHA)復合;② 現(xiàn)有支架設計無法復刻天然骨組織的動態(tài)代謝相互作用;③ 常規(guī)常氧體外培養(yǎng)會損害骨髓間充質(zhì)干細胞(BMSCs)的干性和成骨能力,而缺氧骨髓微環(huán)境可通過代謝適應維持這些特性。

乳酸在骨生物學中具有細胞類型依賴性雙重作用:對BMSCs可通過組蛋白H3K18乳酸化或嗅覺受體Olfr1440激活發(fā)揮促成骨作用,但對牙周膜干細胞則通過MCT1-mTOR介導的自噬抑制抑制成骨;同時乳酸還可調(diào)控免疫重編程(如誘導巨噬細胞向M2型極化)。然而,當前研究存在三大空白:① 尚無支架設計利用乳酸的促成骨潛力;② 組蛋白乳酸化以外的機制未被探索;③ 乳酸對成骨關鍵調(diào)控因子(如RUNX2)的影響未知。

2. 研究內(nèi)容

2.1 支架制備與表征

采用溶劑澆鑄結合3D打印技術制備PCL/nHA/SL復合支架,具體參數(shù)如下:

  • 材料比例:PCL(70% w/w)、nHA(30% w/w),乳酸鈉(SL)濃度梯度為0.5%–5% w/w;
  • 3D打印參數(shù):噴嘴直徑200 μm,纖維直徑200±50 μm,孔徑330±50 μm,支架尺寸為Φ5 mm×2 mm(圓柱狀);
  • 后處理:60℃固化12小時,60Co γ射線(25 kGy)滅菌,無菌PBS沖洗2次;
  • 性能檢測:檢測1、3、7、14、21、28天的pH值、重量損失、Ca2?釋放量;37℃模擬體液(SBF)中搖瓶培養(yǎng)28天評估降解率,采用電感耦合等離子體發(fā)射光譜(ICP-OES)檢測離子濃度。

2.2 BMSCs分離與培養(yǎng)

使用人BMSCs(ATCC? PCS-500-012?),在含10%胎牛血清(FBS)和1%青霉素/鏈霉素的DMEM培養(yǎng)基中培養(yǎng)(37℃、5% CO?),選用第3代細胞進行實驗;支架接種密度為4×10?個細胞/支架,分別采用基礎培養(yǎng)基或成骨誘導培養(yǎng)基(含0.1 mM地塞米松、8 mM β-甘油磷酸鈉、50 μg/mL抗壞血酸)培養(yǎng),每3天換液。

2.3 生物相容性與細胞活力檢測

  • 細胞活力:采用LIVE/DEAD?試劑盒(2 μM鈣黃綠素-AM、4 μM碘化丙啶)染色,Cytation5細胞成像儀觀察;
  • 細胞增殖:CCK-8法檢測1、3、5、7天的吸光度(450 nm);
  • 細胞骨架分析:4%多聚甲醛(PFA)固定,0.1% Triton X-100透化,Alexa Fluor? 594-鬼筆環(huán)肽(F-actin,紅色)和DAPI(細胞核,藍色)染色,Zeiss LSM 880共聚焦顯微鏡(63×油鏡)觀察。

2.4 成骨分化評估

  • 堿性磷酸酶(ALP)活性:采用p-硝基苯磷酸(pNPP)底物檢測7、14天活性,結果歸一化為總蛋白濃度(BCA法);
  • 鈣沉積:20 μM二甲酚橙(XO)和茜素紅S(ARS)染色,ImageJ定量熒光強度(德克薩斯紅濾光片)和礦化結節(jié)面積;
  • 成骨標志物:Western blot檢測RUNX2、COL1A1、OCN、OPN(蛋白上樣量20 μg/泳道,抗體稀釋比1:1000);
  • 乳酸濃度:采用乳酸檢測試劑盒(Biovision, K607-100)檢測1、7、14、21天培養(yǎng)基中乳酸水平。

2.5 賴氨酸乳酸化蛋白質(zhì)組學

BMSCs在PCL/nHA/SL或PCL/nHA支架上培養(yǎng)14天后,提取蛋白并胰酶消化,采用抗K-Lac抗體偶聯(lián)磁珠富集乳酸化肽段,通過4D無標記LC-MS/MS(timsTOF Pro質(zhì)譜儀,Bruker)分析;使用MaxQuant(v1.6.15.0)匹配UniProt人類數(shù)據(jù)庫(2022),篩選差異乳酸化位點(FC>1.5,P<0.05),并進行GO/KEGG富集分析(Fisher精確檢驗,P<0.05);手動驗證STAT1-K193乳酸化(Mascot評分>200,定位概率>99%)。

2.6 基因修飾與實驗組設計

采用慢病毒轉染(MOI=20,2 μg/mL聚凝胺孵育72小時)進行基因修飾,設計兩組關鍵實驗:

實驗1:STAT1乳酸化對STAT1-Runx2相互作用的影響(Table 1)

組別 實驗設計詳情
無支架BMSCs(NC載體) 轉染空載體的無支架BMSCs(基線對照)
無支架BMSCs(Runx2-OE) 過表達Runx2的無支架BMSCs(pLVX-Runx2)
無支架BMSCs(Runx2-OE+STAT1-KD) 過表達Runx2且敲低STAT1的無支架BMSCs(shSTAT1)
無支架BMSCs(Runx2-OE+STAT1-OE) 過表達Runx2且過表達野生型STAT1的無支架BMSCs(pLVX-STAT1-WT)
有支架BMSCs(Runx2-OE+STAT1-OE) 過表達Runx2且過表達野生型STAT1的BMSCs,接種于PCL/nHA/SL支架

轉染后48小時進行機制檢測:免疫熒光檢測STAT1/Runx2共定位;Co-IP(STAT1抗體 pull-down)檢測乳酸化和Runx2結合;ChIP-qPCR檢測Runx2與骨鈣素啟動子的結合;Western blot檢測Runx2和OCN表達(GAPDH歸一化)。

實驗2:STAT1-K193R對乳酸誘導成骨的影響(Table 2)

組別 實驗設計詳情
無支架BMSCs(NC載體) 無支架的BMSCs(陰性對照)
有支架BMSCs(NC載體) 接種于PCL/nHA/SL支架的BMSCs(陽性對照)
有支架BMSCs(STAT1-KD) 敲低STAT1的BMSCs,接種于PCL/nHA/SL支架
有支架BMSCs(STAT1-KD+STAT1-WT) 敲低STAT1后回補野生型STAT1的BMSCs,接種于PCL/nHA/SL支架
有支架BMSCs(STAT1-KD+STAT1-K193R) 敲低STAT1后回補乳酸化缺陷型STAT1-K193R突變體的BMSCs,接種于PCL/nHA/SL支架

成骨誘導培養(yǎng)基培養(yǎng)14天后,檢測ALP活性、ARS礦化及Western blot(Runx2、COL1A1、OCN、OPN),全程定量乳酸水平。

2.7 STAT1乳酸化功能研究

  • Co-IP:細胞裂解液與抗STAT1抗體(或?qū)φ誌gG)4℃孵育過夜,Protein A/G瓊脂糖珠 pull-down,免疫印跡檢測K-乳酸化(1:300)和STAT1(1:500);
  • 亞細胞定位:免疫熒光(抗STAT1抗體1:200,Alexa Fluor? 488/555二抗)檢測STAT1分布;
  • 突變體轉染:Lipofectamine 3000將HA標記的STAT1突變體(K193R、K584R)轉染293T細胞;
  • STAT1-RUNX2相互作用:ChIP(抗RUNX2抗體)結合骨鈣素啟動子特異性引物檢測。

2.8 體內(nèi)骨再生實驗

對SD大鼠(n=6/組)構建5 mm直徑臨界尺寸顱骨缺損模型,實驗組植入支架,對照組不處理;12周后取材,4% PFA固定,采用:① 顯微CT(Skyscan 1176)掃描,CTAn軟件定量新骨形成(BV/TV、Tb.N、Tb.Th);② 組織學染色(HE、Masson三色染色);③ 免疫組化(OCN、RUNX2)。

2.9 統(tǒng)計分析

數(shù)據(jù)以均值±標準差(n=3)表示,采用Student t檢驗或單因素方差分析(ANOVA)結合Tukey事后檢驗(GraphPad Prism 9.0),P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。

Fig. 1. PCL/nHA/SL支架中乳酸最佳濃度確定。(A)乳酸釋放動力學:PCL/nHA/SL支架的乳酸持續(xù)釋放與PCL/nHA支架的基線水平對比;(B)CCK-8檢測:0.5%–1%(w/w)乳酸維持細胞活力,5%乳酸顯著抑制增殖;(C)Western blot分析7天培養(yǎng)的早期成骨標志物(Runx2、COL1A1);(D)Western blot分析14天培養(yǎng)的晚期成骨標志物(OCN、OPN)。(數(shù)據(jù)歸一化至β-actin;結果表示為均值±標準差;*p<0.05,**p<0.01,***p<0.001,****p<0.0001)
Fig. 2. 聚己內(nèi)酯/納米羥基磷灰石(PCL/nHA)和聚己內(nèi)酯/納米羥基磷灰石/乳酸鈉(PCL/nHA/SL)復合支架的生物相容性評估。(A)模擬體液(SBF)中的pH值變化;(B)支架在SBF中的重量損失;(C)支架隨時間釋放的Ca2?濃度;(D)BMSCs在支架上培養(yǎng)1、3、5、7天的活/死染色(比例尺:300 μm;活細胞:綠色;死細胞:紅色);(E)活細胞密度定量分析:兩組增殖動力學相當;(F)CCK-8檢測:細胞增殖呈時間依賴性,組間無差異(p>0.05);(G、H)鬼筆環(huán)肽/DAPI染色及熒光強度定量:細胞骨架廣泛鋪展(比例尺:300 μm;F-肌動蛋白:紅色;細胞核:藍色)。(結果表示為均值±標準差;*p<0.05,**p<0.01,***p<0.001,****p<0.0001)
Fig. 3. 支架的成骨分化潛力。(A)XO染色(14、21天)顯示鈣沉積(紅色熒光,比例尺:300 μm);(B)礦化面積(%)定量;(C)ALP活性時間曲線:PCL/nHA/SL支架促進早期分化,聯(lián)合成骨誘導處理(PCL/nHA/SL+OD)活性達峰值;(D)乳酸釋放動力學:PCL/nHA/SL支架的乳酸持續(xù)釋放與PCL/nHA支架的基線水平對比;(E)21天培養(yǎng)過程中成骨標志物(Runx2、COL1A1、OCN、OPN)的Western blot分析。(數(shù)據(jù)歸一化至β-actin;結果表示為均值±標準差;*p<0.05,**p<0.01,***p<0.001,****p<0.0001)
Fig. 4. 賴氨酸乳酸化蛋白質(zhì)組學。(A)乳酸化位點火山圖(PCL/nHA vs PCL/nHA/SL):紅色/藍色分別表示上調(diào)/下調(diào)位點;(B)乳酸化蛋白的GO/KEGG富集分析(如骨化調(diào)控、成骨細胞分化、JAK-STAT通路);(C)MS/MS譜圖驗證STAT1-K193乳酸化;(D)乳酸化位點序列基序分析:熱圖顯示乳酸化位點周圍的氨基酸偏好性。
Fig. 5. STAT1乳酸化功能表征。(A)免疫印跡檢測全局K-Lac水平;(B)Co-IP(抗乳酸賴氨酸抗體)驗證STAT1乳酸化;(C)STAT1亞細胞定位:PCL/nHA/SL組(7–14天)STAT1胞質(zhì)聚集,PCL/nHA對照組呈核-質(zhì)分布(比例尺:20 μm;STAT1:綠色;DAPI:藍色);(D)環(huán)己酰亞胺追蹤實驗評估STAT1蛋白穩(wěn)定性;(E)免疫熒光顯示乳酸誘導STAT1胞質(zhì)轉運。(數(shù)據(jù)歸一化至β-actin;結果表示為均值±標準差;*p<0.05,**p<0.01,***p<0.001,****p<0.0001)
Fig. 6. K193乳酸化調(diào)控STAT1亞細胞轉運。(A)Co-IP驗證STAT1突變體的乳酸化水平差異;(B)HA標記STAT1變體的亞細胞定位:PCL/nHA/SL培養(yǎng)中,WT和K584R定位于胞質(zhì),K193R滯留于核內(nèi)(比例尺:20 μm;STAT1:綠色;DAPI:藍色)。(數(shù)據(jù)歸一化至β-actin;結果表示為均值±標準差;*p<0.05)
Fig. 7. 乳酸化依賴性STAT1-Runx2相互作用。(A)Runx2核轉運共聚焦成像:STAT1-KD細胞中Runx2核轉運增強,STAT1-OE抑制該過程,支架共培養(yǎng)可恢復(比例尺:20 μm;Runx2:紅色;STAT1:綠色;DAPI:藍色);(B)Co-IP分析STAT1-Runx2結合;(C)STAT1-Runx2軸調(diào)控OCN表達;(D)ChIP-qPCR顯示乳酸化依賴性STAT1在Runx2啟動子的染色質(zhì)占據(jù)。(數(shù)據(jù)歸一化至β-actin;結果表示為均值±標準差;*p<0.05,**p<0.01,***p<0.001,****p<0.0001)
Fig. 8. STAT1乳酸化機制的基因驗證。(A)ARS染色(14天)顯示礦化差異;(B)14天成骨標志物和STAT1的Western blot;(C)STAT1-KD+K193R突變體組的ALP活性降低。(數(shù)據(jù)歸一化至β-actin;結果表示為均值±標準差;*p<0.05,**p<0.01,***p<0.001,****p<0.0001)
Fig. 9. 體內(nèi)骨再生性能。(A)12周組織學分析:HE染色、Masson三色染色及OCN/RUNX2免疫組化(紅色比例尺:500 μm;綠色比例尺:100 μm;N:新骨;F:纖維組織;S:殘留支架);(B)缺損部位3D顯微CT重建(紅色比例尺:500 μm);(C)顯微CT定量參數(shù):骨體積分數(shù)(BV/TV,%)、骨小梁數(shù)量(Tb.N,mm?1)、骨小梁厚度(Tb.Th,mm)。(結果表示為均值±標準差;*p<0.05,**p<0.01,***p<0.001,****p<0.0001)

3. 研究結論

  1. 支架優(yōu)化與生物相容性:1% SL為最佳濃度,可維持BMSCs活力(>95%)并顯著促進成骨分化;PCL/nHA/SL支架在28天降解過程中維持pH 5.8–6.6(輕度酸性),持續(xù)釋放低濃度Ca2?,無明顯細胞毒性。
  2. 成骨分化增強:基礎條件下,PCL/nHA/SL支架14天鈣沉積是PCL/nHA的2.1倍;成骨誘導條件下,21天鈣沉積是PCL/nHA的2.4倍;ALP活性從7天起提升2.4–2.7倍,成骨標志物(Runx2、COL1A1、OCN、OPN)呈階段特異性上調(diào)(早期Runx2/COL1A1先升,晚期OCN/OPN后升)。
  3. 乳酸化調(diào)控機制:蛋白質(zhì)組學鑒定出190個蛋白的376個差異乳酸化位點,其中STAT1-K193乳酸化是關鍵:① 乳酸化誘導STAT1胞質(zhì)聚集,延長其半衰期(從3.07 h至4.94 h);② 破壞STAT1與RUNX2的結合,解除對RUNX2的抑制,激活成骨轉錄程序;③ K193是唯一關鍵乳酸化位點,K193R突變體可完全阻斷乳酸誘導的成骨效應。
  4. 體內(nèi)骨再生效果:PCL/nHA/SL支架12周可實現(xiàn)臨界尺寸顱骨缺損的近完全修復,形成致密有序的骨小梁網(wǎng)絡;顯微CT顯示BV/TV、Tb.N、Tb.Th顯著高于對照組(P<0.01 vs 空白對照,P<0.05 vs PCL/nHA),免疫組化證實OCN/RUNX2持續(xù)高表達。
  5. 研究意義:提出“3D打印結構+乳酸代謝重編程”的新型生物材料策略,首次揭示非組蛋白(STAT1)乳酸化介導的代謝-表觀遺傳串擾機制,為骨組織工程提供可轉化的修復平臺。

4. 論文信息

  • 論文標題:乳酸功能化3D打印PCL/nHA支架通過代謝-表觀遺傳串擾驅(qū)動BMSC成骨研究
  • 作者信息:曾敏a,b,劉浩a,b,盧偉a,b,陳燦a,b,林章遠a,b,趙瑞波a,b,*;a中南大學湘雅醫(yī)院骨科,中國長沙;b中南大學湘雅醫(yī)院國家老年疾病臨床醫(yī)學研究中心,中國長沙;*通訊作者:趙瑞波,郵箱:370781162@qq.com
  • 期刊信息:Materials Today Bio,Volume 33, 2025, Article 102101;期刊主頁:www.journals.elsevier.com/materials-today-bio
  • DOI:https://doi.org/10.1016/j.mtbio.2025.102101
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